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DIRECCIÓN DE INVESTIGACIÓN Código: Rev. MANUAL DE PROCEDIMIENTOS TÉCNICOS Hoja: 21 de 56 III. PCR 1. Saque todos los reactivos necesarios para el procedimiento y asegúrese de que estén descongelados. Mezcle y centrifugue antes de iniciar la preparación de la mezcla. 2. Alicuote 10µl de la muestra ligada diluida por triplicado. Mantenga las muestras en un bloque frío y en hielo. Coloque un film sobre la placa para protegerla de la contaminación. 3. Prepare la siguiente Mezcla Maestra (Master Mix) de PCR en hielo. (3 reacciones de PCR por muestra) Esta debe prepararse justo antes de utilizarse. Reactivos Agua Titanium Taq PCR Buffer (10X) GC Melt (5M) dNTP (2.5mM each) PCR Primer 002 (100µM) Titanium Taq DNA Polymerase (50X) Total 1 reacción (µL) 3 reacciones (µL) 39.5 10 20 14 4.5 2 90 118.5 30 60 42 13.5 6 270 Se recomienda añadir un control negativo para evaluar la presencia de contaminación 4. Añada 90µl del PCR Master Mix para obtener un volumen final de 100µl. Asegúrese de mezclar bien la mezcla maestra antes de agregarla al DNA ligado. 5. Mezcle la reacción en un vortex durante 3 segundos y luego centrifugue a 2000 rpm. Durante 1 min. 6. Programe el termocilador según la marca de la siguiente forma: GeneAmp® PCR System 9700 Temperatura 94ºC 94ºC 60ºC 68ºC 68ºC 4ºC Tiempo 3 minutos 30 segundos 45 segundos 60 segundos 7 minutos Ciclos 1X 30X 1X ∞ Si no va a procesar la muestra inmediatamente guarde a -20ºC 7. Al finalizar la PCR, tome una alicuota de 3µl y agregue 3µl de buffer de muestra para gel de electroforesis. Corra un gel de Agarosa/ TBE al 2% a 120V durante 50 minutos. Asegúrese que las muestras estén en el rango de tamaña requerido (1500-200pb) CONTROL DE EMISIÓN Elaboró : Nombre Firma Fecha Revisó : Autorizó: