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Teil E: Anhang Arbeitsschritt entspricht, in der Durchführung aber häufig praktikabler ist (Wilson und Wilson, 1997, Brauner et al., 2002, Wiedemeier et al., 1998). Ist die so bestimmte Abbaurate für die aktiven Ansätze größer als die der abiotischen Kontrollen, so ist die Schadstoffminderung stärker als rein physikalische Verluste und die Differenz der so bestimmten Abbauraten würde die biologische Verlustrate bzw. Netto-Abbaurate darstellen (Wilson und Wilson, 1997, Borden et al., 1997, Brauner et al., 2002). Dieser Schritt entfällt, wenn als Darstellungsform der Ergebnisse die Variante „Relativwert der vergifteten Kontrolle“ gewählt wird (Wilson Durant et al., 1999). Ein wesentliches Problem bei der Bestimmung von Abbauraten stellen die unterschiedlichen Phasen des Abbaus (lag-Phase, exponentielle Abbauphase, asymptotische Phase) dar, welche nicht durch Abbauraten 1. Ordnung beschrieben werden können (Borden et al., 1997). Brauner et al. (2002) schlagen deshalb vor, für die Bestimmung der Abbauraten in den aktiven Ansätzen nur die Datenpunkte zu verwenden, die nach der lag-Zeit liegen und den Abbau widerspiegeln, während für die Kontroll-Mikrokosmen alle Datenpunkte zu Berechnung der Abbauraten genutzt werden sollten. Neben der Entwicklung der Schadstoffkonzentrationen können auch weitere Parameter im Rahmen der Datenanalyse ausgewertet werden. Zur Berechnung des Verbrauches an Elektronenakzeptoren schlagen Brauner et al. (2002) beispielsweise die Bildung der Differenz zwischen den Konzentrationen in den aktiven und in den Kontroll-Mikrokosmen vor. Bezüglich einer Bilanzierung der Schadstoffe unter Berücksichtigung der Elektronenakzeptoren ist auf Held et al. (2006) zu verweisen. Literatur Aamand, J., Jørgensen, C., Arvin, E., Jensen, B. (1989): Microbial adaptation to degradation of hydrocarbons in polluted and unpolluted groundwater. Journal of Contaminat Hydrology 4, 299-312. Alfreider, A., Vogt, C., Babel, W. (2003): Expression of Chlorocatechol 1,2-Dioxygenase and Chlorocatechol 2,3-Dioxygenase Genes in Chlorobenzene-Contaminated Subsurface Samples. Appl. Environ. Microbiol. 69(3), 1372-1376. Arvin, E., Jensen, B., Aamand, J., Jørgensen, C. (1988): The Potential of free-living ground water bacteria to degrade aromatic hydrocarbons and heterocyclic compounds. Wat. Sci. Tech. 20(3), 109118. Bakermans, C. und E. L. Madsen (2002): Detection in coal tar waste-contaminated groundwater of mRNA transcripts related to naphthalene dioxygenase by fluorescent in situ hybridization with tyramide signal amplification. Journal of Microbiological Methods 50(1), 75 – 84. Barbaro, J. R., Barker, J. F., Lemon, J. A., Mayfield, C. I. (1992): Biotransformation of BTEX under Anaerobic, Denitrifying Conditions: Field and laboratory observations. J. Contam. Hydrol. 11, 245-272. Bast, E. (1999): Mikrobiologische Methoden: Eine Einführung in grundlegende Arbeitstechniken. Spektrum, Heidelberg. Bedessem, M. E., Swoboda-Colberg, N. G., Colberg, P. J. S. (1997): Naphthalene mineralization coupled to sulphate reduction in aquifer-derived enrichments. FEMS Microbiology Lettres 152, 213218. Beller, H. R., Grbi(-Gali(, D., Reinhard, M. (1992): Microbial Degradation of Toluene under SulfateReducing Conditions and the Influence of Iron on the Process. Appl. Environ. Microbiol 58, 786-793. Bengtsson, G. (1985): Microcosm for Ground Water Research. In: Ward, C.H., Giger, W. McCarty, P.L.: Ground Water Quality. John Wiley & Sons, New York, Chichester, Brisbane, Toronto, Singapore. Berghoff, A., Dethlefsen, F., Farahbakhsh, M., Wienberg, R., Mahro, B. (2005): MikrokosmenVersuche zur Bewertung von BTEX- und PAK-Abbauprozessen im Aquifer am Standort CastropRauxel. In: DECHEMA Gesellschaft für Chemische Technik und Biotechnologie e.V. (Hrsg.): KORA Kontrollierter natürlicher Rückhalt und Abbau von Schadstoffen bei der Sanierung kontaminierter Grundwässer und Böden, KORA Statusseminar 2005, 147-157. - 192 -